Bucculite FdU 細胞增殖熒光成像試劑盒是美國AAT Bioquest生產的用于檢測細胞活力的試劑盒，監測細胞增殖是評估細胞活力，細胞周期和遺傳毒性的可靠方法之一。檢測細胞增殖的一種基本方法是在細胞生長的S期過程中，在存在胸腺嘧啶核苷的情況下測量DNA合成。該細胞增殖熒光成像試劑盒使用FOL-FdU（胸苷的類似物）。FOL-FdU在DNA合成過程中被摻入細胞DNA中。固定細胞后，通過我們的Bucculite 標記技術用MTA-iFluor 555標記摻入的FOL-FdU。在FITC通道中可視化細胞中形成的iFluor 555標記的DNA。該 細胞增殖熒光成像試劑盒提供了基于抗BrdU抗體的檢測和EdU點擊化學檢測的替代方法。百螢生物是AAT Bioquest的中國代理商，為您提供優質的Bucculite FdU 細胞增殖熒光成像試劑盒。

樣品實驗方案

簡要概述

1.準備細胞（對于96孔板為100 µL /孔，對于384孔板為25 µL /孔）

2.對于96孔板，以100 µL /孔添加2X FOL-FdU工作溶液

3.在37oC下孵育3小時

4.取出培養基，并在室溫下用100µL冰冷的90％甲醇的PBS溶液固定細胞15分鐘

5.除去固定液并用PBS洗滌3次

6.加入1X iFluor 555-MTA工作溶液（100 µL /孔）并在室溫下染色30分鐘。

7.除去每個孔中的工作溶液，并用1X洗滌緩沖液洗滌細胞3次。

8.加入100µL 1X洗滌緩沖液/孔，并用FITC濾光片組觀察紫外熒光顯微鏡。

溶液配制

1.儲備溶液配制

所有未使用的儲備溶液應分為一次性使用的等分試樣，并在制備后儲存在-20°C下。避免重復凍融循環。

1.1 FOL-FdU儲備溶液（1000X）：
將500 µL DMSO（組分E）添加到FOL-FdU（組分A）中，制成1000X儲備溶液。注意：此1000X濃度是使用具有佳FOL-FdU濃度的HeLa細胞開發的。生長培養基，細胞密度，細胞類型變化和其他因素可能會影響標記。我們建議測試一系列FOL-FdU濃度，以確定適合您的細胞類型和實驗條件的佳濃度。

1.2 iFluor 488-MTA儲備溶液（400X）：
將50 µL DMSO（組分E）添加到iFluor 555-MTA（組分B）中，制成400 X iFluor 555-MTA儲備溶液。

2.工作溶液

2.1 2X FOL-FdU工作溶液

在培養基中將1000X FOL-FdU儲備溶液稀釋500倍，以制備2X FOL-FdU工作溶液。

2.2 1X iFluor 555-MTA工作溶液

將2.5 µL 400X iFluor 555-MTA儲備溶液添加到1mL染色緩沖液（組分C）中，以制備1X iFluor 555-MTA工作溶液。

2.3 X洗滌緩沖液

向9mL PBS中加入1mL 10X洗滌緩沖液（組分D），制成1X 洗滌緩沖液。

操作步驟

1.準備細胞

1.1對于貼壁細胞：將細胞在生長培養基中以10,000至40,000個細胞/孔/ 100 µL（對于96孔板）過夜培養，以2,500至10,000個細胞/孔/ 20 µL（對于384孔板）過夜培養。

1.2對于非貼壁細胞：離心培養液中的細胞，并將細胞沉淀以1-2 X 106細胞/ ml（對于10個96孔板為10 mL）懸浮在培養液中。注意：應單獨評估每個細胞系，以確定佳細胞密度。

2.用FOL-FdU標記細胞

2.1將等體積的2X FOL-FdU工作溶液添加到含有要處理的細胞的培養基中，以在每個孔中獲得1X FOL-FdU溶液。我們不建議更換所有培養基，因為這可能會影響細胞增殖速率。

2.2在適合細胞類型的條件下孵育細胞3小時。FOL-FdU暴露于細胞的時間可以直接測量合成DNA的細胞。孵育時間取決于細胞生長速率。

3.細胞固定

3.1孵育后，移出培養基，并向每個孔中加入100µL冰冷的PBS中的90％甲醇（未提供，甲醇/ PBS，v / v為90/10），并在室溫下孵育15分鐘。

3.2除去固定緩沖液，并用PBS清洗每個孔中的細胞兩次。

4.染色細胞

4.1在細胞板中加入100 µL /孔（96孔板）或50 µL /孔（384孔板）的1X iFluor 488-MTA工作溶液。在避光的條件下，將細胞與工作溶液在室溫下孵育30分鐘。

4.2除去每個孔中的工作溶液。

4.3用1X洗滌緩沖液洗滌細胞3次，洗滌后每孔加入100µL洗滌緩沖液。注意：如果需要Hoechst 33342染色劑，請在1X洗滌緩沖液中制成5-10 µg / ml Hoechst 33342溶液并染色30分鐘。

4.4使用帶有FITC濾光片組的熒光顯微鏡觀察細胞中的熒光信號。