動物細胞裂解液使用說明書

【資料簡介】

 

注意事項 1、    如果在本產品中額外再加入終濃度為1×的、新鮮配制的蛋白酶抑制劑復合物，可以更有效地抑制蛋白酶活性，防止蛋白降解。 2、    如果用于信號傳遞研究，在本產品中加入終濃度為1×的、新鮮配制的磷酸酶抑制劑復合物。 3、    整個裂解步驟都要在冰浴或4℃操作。本產品和PBS均需預先冷卻。 4、    本產品所含有較高濃度的去垢劑會對Bradford蛋白濃度測定有較大影響，因此只能使用BCA法測定蛋白濃度。   一：處理貼壁的培養細胞 1、    去除貼壁細胞培養液，用冰浴預冷的PBS洗兩遍，去盡殘留的PBS。 2、    將培養板放置在冰上待用。 3、    按每106個細胞加入0.1 mL本產品（或100mm貼壁細胞加1mL本產品）的比例向培養板中加入適量的本產品（按此比例裂解得到的裂解物的蛋白濃度約在5-10 mg/mL之間）。 注意：裂解效率跟細胞數量和本產品用量的比例密切相關。一般情況下6孔板的單孔（1～2×106細胞）需要0.1~0.2 mL本產品；25 cm2培養瓶（3～6×106細胞）需要0.3~0.6 mL；75 cm2培養瓶（1～2×107細胞）需要1~2 mL。對于特別大或特別小的細胞，需要用戶摸索*用量。 4、    冰上放置10-30分鐘（*時間跟細胞系相關），其間偶爾輕輕搖晃或用槍頭輕輕吹打。 5、    將細胞培養板傾斜使上清液匯集在一端，并將其全部轉移到一個新的1.5 mL塑料離心管中。 6、    15,000×g，4℃離心10分鐘，將上清轉移到一個新的1.5 mL塑料離心管中，放置在冰上待用或放-80℃長期保存。注意：如果用于免疫沉淀，新鮮使用。 7、    使用前先測定上清液的蛋白濃度，然后再進行后續的電泳、Western或免疫沉淀操作。   二：處理懸浮細胞 1、    400×g，4℃離心10分鐘收集懸浮細胞，棄上清。 2、    用等體積的預冷PBS洗滌細胞沉淀兩遍，步驟同*步。 3、    按每106個細胞加入0.1 mL本產品的比例加入本產品，充分懸浮細胞。 4、    冰上放置15分鐘裂解細胞，期間偶爾輕柔震蕩。 5、    15,000×g，4℃離心10分鐘，將上清轉移到一個新的1.5 mL塑料離心管中。為避免吸取到細胞沉淀，留20-40uL液體不取。 6、    將上清液放置在冰上待用或放-80℃長期保存。注意：如果用于免疫沉淀，新鮮使用。 7、    使用前先測定上清液的蛋白濃度，然后再進行后續的電泳、Western或免疫沉淀操作。   三：處理組織塊 1、    稱量組織塊，用毛玻片或玻璃勻漿器研磨或勻漿，用5-10倍體積的、預冷的PBS洗兩次（包括沖洗器材）。 2、    將勻漿物轉移到離心管中，1500g、4℃離心5分鐘后棄上清。 3、    按每50 mg組織加入0.2 mL本產品的比例加入預冷的本產品，吹打混勻，放置冰上。 4、    每隔5分鐘振蕩器輕柔振蕩一次，共4次。 5、    15,000×g、4℃離心10分鐘，將上清轉移到一個新的1.5 mL塑料離心管中，放置在冰上待用或放-80℃長期保存。注意：如果用于免疫沉淀，新鮮使用。 6、    使用前先測定上清液的蛋白濃度，然后再進行后續的電泳、Western或免疫沉淀操作。