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中級(jí)會(huì)員 | 第14年

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標(biāo)準(zhǔn)品
培養(yǎng)基
培養(yǎng)基原料 霍亂弧菌診斷血清 大腸艾希氏菌診斷血清 志賀氏菌屬診斷血清 沙門(mén)氏菌屬診斷血清 標(biāo)準(zhǔn)血清,診斷血清 抗生素藥敏紙片 微生物配套試劑 微生物生化管 管裝培養(yǎng)基 即用型液體培養(yǎng)基 一次性培養(yǎng)基平板 顯色培養(yǎng)基 臨床培養(yǎng)基 菌種保存培養(yǎng)基 四環(huán)素檢定、厭氧亞硫酸鹽還原桿菌檢測(cè)培養(yǎng)基 維生素檢測(cè)培養(yǎng)基 一次性衛(wèi)生用品衛(wèi)生檢測(cè)培養(yǎng)基 罐頭食品商業(yè)無(wú)菌檢測(cè)培養(yǎng)基 飲用水及水源檢測(cè)培養(yǎng)基 藥品、生物制品檢測(cè)培養(yǎng)基 化妝品檢測(cè)培養(yǎng)基 動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)基 啤酒檢驗(yàn)培養(yǎng)基 軍團(tuán)菌檢測(cè)培養(yǎng)基 支原體檢測(cè)培養(yǎng)基 小腸結(jié)腸炎耶爾森氏菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 彎曲桿菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 產(chǎn)氣莢膜梭菌、肉毒梭菌、厭氧菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 阪崎腸桿菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 溶血性鏈球菌檢測(cè)培養(yǎng)基 李斯特氏菌檢測(cè)培養(yǎng)基 弧菌檢測(cè)培養(yǎng)基 乳酸菌、雙歧桿菌檢測(cè)培養(yǎng)基 酵母、霉菌檢測(cè)培養(yǎng)基 檢測(cè)培養(yǎng)基 沙門(mén)氏菌、志賀氏菌檢驗(yàn)培養(yǎng)基 大腸菌群、糞大腸菌群、大腸桿菌及腸桿菌科檢測(cè)培養(yǎng)基 細(xì)菌總數(shù)檢測(cè),增菌培養(yǎng)基
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生物試劑
細(xì)胞
菌株
血清
細(xì)胞分離試劑
試劑盒

實(shí)驗(yàn)技巧:免疫組化實(shí)驗(yàn)常見(jiàn)問(wèn)題解答

時(shí)間:2013/7/17閱讀:1733
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問(wèn)題及其解答:產(chǎn)生組織切片非特異性染色的原因有哪些?如何解決?

1、 抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)、抗體濃度高易增加背景著色。這可通過(guò)縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來(lái)控制。這是zui重要的一條。

2、 一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,建議試用單克隆抗體看看。

3、內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和在肝臟、腎臟等組織含量很高(含血細(xì)胞多的組織),需要通過(guò)延長(zhǎng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來(lái)降低背景染色;

4、 非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過(guò)延長(zhǎng)二抗來(lái)源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來(lái)加強(qiáng)封閉效果;

5、 DAB孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或濃度過(guò)高;

6、 PBS沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色,在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤為重要;

7、 標(biāo)本染色過(guò)程中經(jīng)常出現(xiàn)干片,這容易增強(qiáng)非特異性著色。

我的實(shí)際解決方案:

以上的分析可能對(duì)于初學(xué)者還是不容易的,下面我就把我的排除實(shí)驗(yàn)的具體過(guò)程與大家進(jìn)行分享、交流和討論。

1、首先排除抗體孵育條件。一般來(lái)說(shuō),著色效果的好壞與抗體的孵育條件是密不可分的,由于用SP法已經(jīng)做出來(lái)過(guò)一次且效果不錯(cuò),因此對(duì)于同樣組織的同一抗原進(jìn)行分析,這種因素可以先排除。

2、其次,DAB孵育時(shí)間是否太長(zhǎng)?做出來(lái)那一次我是孵育8min,后來(lái)也是8-10min,我單獨(dú)做了一次實(shí)驗(yàn)來(lái)排除該因素。結(jié)果孵育2、5min時(shí)先出現(xiàn)背景,而特異性染色較淺,故這不符合常理,一般先出現(xiàn)特異性染色,然后隨著時(shí)間的延長(zhǎng),會(huì)出現(xiàn)非特異性背景著色。

3、zui后,血清封閉的問(wèn)題?以前我一般孵育15-30min,所以我單獨(dú)做了一次實(shí)驗(yàn)用血清封閉室溫1h,其它條件同做出來(lái)的那一次,結(jié)果也一樣背景著色很深。

4、此外,我在改進(jìn)的同時(shí),也對(duì)PBS清洗不斷地延長(zhǎng)時(shí)間和增加次數(shù),甚至*參照試劑盒說(shuō)明書(shū)來(lái)進(jìn)行操作(我以前一般一抗4度過(guò)夜且室溫復(fù)溫45min、二抗37度30min、Sp反應(yīng)37度30min),以及過(guò)氧化氫滅活加強(qiáng)等等均未起到效果。

我冷靜地分析了一下整個(gè)實(shí)驗(yàn)流程,與*次做出來(lái)相比,只有兩個(gè)地方做了改動(dòng):因血清不夠而更換了不同廠家試劑盒、因抗體稀釋液用完而重新買了抗體稀釋液。

5、我用PBS替代一抗稀釋液(我以前還回收抗體,自我覺(jué)得抗體稀釋液中含防腐劑和蛋白穩(wěn)定劑),其它步驟和組織切片*與*次做出來(lái)的一致(包括血清也是老試劑盒內(nèi)剩余的一點(diǎn)),奇跡出現(xiàn)了:結(jié)果很好。--因?yàn)榭乖贵w反應(yīng)除溫度、抗原/抗體濃度外,然后就是PH值,于是我測(cè)了新抗體稀釋液、老抗體稀釋液和PBS的PH值,結(jié)果是前者偏酸性(<6、0),而后兩者均在7、5左右。

6、看來(lái)主要禍根是抗體稀釋液的PH值出問(wèn)題了,于是我又用PBS替代抗體稀釋液和新試劑盒內(nèi)的試劑對(duì)組織切片做了免疫組化,結(jié)果還是沒(méi)有做出來(lái):背景很深。這真把我搞慘了。難道還有什么原因嗎?通過(guò)仔細(xì)分析:一抗一定是結(jié)合上去了(老SP試劑盒結(jié)果很好),問(wèn)題是二抗沒(méi)有結(jié)合上去也不對(duì)(因?yàn)閦ui后背景很深,這說(shuō)明二抗可能也結(jié)合上去了),DAB孵育時(shí)間現(xiàn)在只用1、5min也是背景深而特異性染色淺,那我又懷疑封閉血清了。

7、我做了兩張切片:一張用老試劑盒內(nèi)還剩下一點(diǎn)的血清而另一張用新試劑盒內(nèi)的封閉血清,其余試劑(二抗、SP)均用新試劑盒提供的,結(jié)果是前一張效果很好,而后一張能夠看到特異性染色,但背景太深,拍照效果不佳。--看來(lái)封閉血清也是罪會(huì)禍?zhǔn)字弧?/u>

結(jié)果分析顯示:抗體稀釋液的PH值偏低和封閉血清的失效導(dǎo)致了我的免疫組化結(jié)果的不佳,望大家在以后的組化實(shí)驗(yàn)中也要注意這兩個(gè)不太引人注意的關(guān)鍵問(wèn)題。--慘痛的教訓(xùn),值得引以為鑒。

案例二:DAB染色后切片著色呈陰性結(jié)果

背景:其實(shí)免疫組化在DAB染色后一般有四種情況:陽(yáng)性染色效果很好、陰性染色、非特異性染色很深、陰陽(yáng)臉(染色不均勻)。而陰性染色是許多初學(xué)者經(jīng)常遇到的頭疼問(wèn)題。我身邊有個(gè)研究生同學(xué)在我們實(shí)驗(yàn)室初次涉入免疫組化,聽(tīng)說(shuō)步驟不難,跟我后面做了幾次之后,就自己開(kāi)始做了,連續(xù)做了三次,結(jié)果均是陰性染色。很掃興,不知是什么原因?qū)е碌摹?/u>

問(wèn)題及其解答:免疫組化染色呈陰性結(jié)果的原因有哪些?

1、抗體濃度和質(zhì)量問(wèn)題以及抗體來(lái)源選擇錯(cuò)誤。不知抗體是進(jìn)口的還是國(guó)產(chǎn)的工作液,怎么這么高稀釋度也沒(méi)能做出陽(yáng)性結(jié)果?另外,不是抗體濃度越高就越易出現(xiàn)陽(yáng)性結(jié)果,抗原抗體反應(yīng)有前帶和后帶效應(yīng),必須摸索*濃度。

2、抗原修復(fù)不全,對(duì)于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復(fù)來(lái)打開(kāi)抗原表位,以利于與抗體結(jié)合;建議微波修復(fù)用高火4次*6min試試。有人做過(guò)實(shí)驗(yàn),這是*的時(shí)間和次數(shù)。若不行,還可高壓修復(fù)。

3、組織切片本身這種抗原含量低;

4、血清封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。

5、DAB孵育時(shí)間過(guò)短。

6、細(xì)胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng)。

7、開(kāi)始做免疫組化,我建議你一定要首先做個(gè)陽(yáng)性對(duì)照片,排除抗體等外的方法問(wèn)題。

我的實(shí)際解決方案:

1、首先,排除組織切片內(nèi)的抗原有無(wú)丟失及其含量多少。免疫組化中兩個(gè)zui重要的因素是抗原和抗體。(1)抗原有無(wú)丟失主要看組織切片的新鮮程度,一般切片室溫保存超過(guò)3-6個(gè)月,可能切片內(nèi)的抗原丟失很嚴(yán)重(有文獻(xiàn)支持),此時(shí)可以通過(guò)重新用石蠟塊切片來(lái)進(jìn)一步驗(yàn)證(蠟塊需要低溫保存)。(2)石蠟切片在制作過(guò)程中可能因醛基對(duì)抗原決定族的封閉,這需要通過(guò)抗原修復(fù)來(lái)充分暴露,從而增加抗原抗體結(jié)合反應(yīng),提高陽(yáng)性率,我一般用6min*4次中火微波抗原修復(fù),用緩沖液。(3)組織切片中本身抗原含量的多少?這方面我有教訓(xùn)的,我做胎鼠睪丸間質(zhì)細(xì)胞鑒定,用1:200一抗效果很好;但我用1:200一抗孵育成年睪丸間質(zhì)細(xì)胞檢測(cè),幾乎呈陰性,后來(lái)證實(shí)是因?yàn)閮烧呖乖肯嗖钌踹h(yuǎn),則一抗也要適當(dāng)提高濃度。

2、其次,檢查抗體有無(wú)選擇錯(cuò)誤和抗體孵育條件是否不適。(1)一抗選擇單克隆抗體易出現(xiàn)陰性結(jié)果,因?yàn)殪`敏度低但特異性好;一抗的species reactivity中無(wú)檢測(cè)組織的種屬,這是比較常見(jiàn)的錯(cuò)誤;一抗選擇rat,而二抗是抗mouse/rabbit等均有可能出現(xiàn)陰性結(jié)果。(2)抗體孵育時(shí)間過(guò)短,容易導(dǎo)致陰性結(jié)果。一般一抗我建議4度孵育過(guò)夜和37度復(fù)溫45min;二抗我一般37度30min。我不喜歡參照二抗染色試劑盒說(shuō)明書(shū)。(3)抗體濃度過(guò)低。這是陰性結(jié)果的zui可能原因。必須提高稀釋度,我一般初次做一種新抗體,喜歡先用說(shuō)明書(shū)建議的低濃度和高濃度做一次,然后決定是向高還是低方向摸索。一般先決定二抗的濃度(工作液就好辦了,直接滴加),重點(diǎn)摸索一抗的zui適濃度。注意:免疫反應(yīng)中存在前帶和后帶效應(yīng),這提示不是濃度越高,陽(yáng)性率就越高,反之亦然。(4)重要原因排除之后,也不要忽視抗體的質(zhì)量:原裝抗體一般比較穩(wěn)定,效果較好;而進(jìn)口分裝次之;工作液可能要注意質(zhì)量問(wèn)題。

3、同時(shí),DAB的孵育時(shí)間可能要適當(dāng)延長(zhǎng),在鏡下觀察,有時(shí)可延長(zhǎng)至30min。但一般3-10min,此時(shí)背景也較淺。否則,說(shuō)明抗體濃度不合適。

4、zui后,血清封閉時(shí)間也可相應(yīng)縮短。一般10-30min,但這個(gè)時(shí)間可以調(diào)整,封閉主要是降低切片的總體背景著色。

5、此外,細(xì)胞通透也不可忽視。許多戰(zhàn)友認(rèn)為石蠟切片一般不需細(xì)胞通透,因?yàn)榍衅瑫r(shí)可能已經(jīng)把細(xì)胞切開(kāi)了,但對(duì)于胞核蛋白,建議還是通透一下,促進(jìn)抗體等試劑充分進(jìn)入?yún)⑴c反應(yīng)。

6、以上原因,都是針對(duì)實(shí)際中常見(jiàn)原因來(lái)進(jìn)行分析的,前提是排除操作者的操作錯(cuò)誤而引起陰性結(jié)果,這就需要新手還是要設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照以排除方法的問(wèn)題。還有抗體稀釋液的PH值過(guò)低等其它原因的干擾。

總之,要想把免疫組化做好,可能每一個(gè)環(huán)節(jié)都很重要,但也存在主次之分,出現(xiàn)問(wèn)題了,需要通過(guò)先排除主要的,再依次排除次要的--這是衡量你對(duì)免疫組化原理掌握與否的關(guān)鍵所在。

案例三:石蠟切片免疫熒光染色呈陰性結(jié)果或非特異性結(jié)果

背景:因?qū)嶒?yàn)需要,于2008年07月04日初次做肝臟組織ZO-1(一種胞膜蛋白,緊密連接蛋白)免疫熒光染色,以前我對(duì)酶免疫組化非常熟悉,在園子內(nèi)也有不少置頂貼和精華帖,但免疫熒光一直還沒(méi)做過(guò)(原理知道,但細(xì)節(jié)不太了解)。我先用石蠟切片做了5次,結(jié)果一直不理想(表現(xiàn)為未見(jiàn)特異性強(qiáng)染色);近幾日,我又切了冰凍切片,做了2次,終于基本成功了。在這個(gè)過(guò)程中,我對(duì)免疫熒光染色技術(shù)有了全新的認(rèn)識(shí),而前些天發(fā)出免疫熒光求助貼,回復(fù)的很少,所以有必要加強(qiáng)對(duì)免疫熒光方面的討論),不妥之處敬請(qǐng)指正。有人會(huì)問(wèn)酶免疫組化做的好好的,為何要做免疫熒光?其實(shí),這也是我以前思考的難題,現(xiàn)在我認(rèn)為可能胞膜蛋白含量不高,用普通免疫免疫組化可能做不出來(lái),需要敏感的免疫熒光方法來(lái)進(jìn)行蛋白檢測(cè)(我是看許多外文文獻(xiàn)都是這樣做的,因此選擇免疫熒光染色。)

問(wèn)題及其解答:如何降低非特異性熒光染色和避免陰性著色?

1、非特異性染色產(chǎn)生原因及其解決方案:

(1)游離熒光素殘留在二抗中。一部分熒光素未與蛋白質(zhì)結(jié)合,形成了聚合物和衍化物,而不能被透析除去。二抗配置時(shí)用透析法或?qū)游龇ǚ蛛x熒光素標(biāo)記的二抗和游離的二抗。購(gòu)買高質(zhì)量、高純度的熒光素二抗。

(2)抗體以外的血清蛋白與熒光素結(jié)合形成熒光素脲蛋白,可與組織成分結(jié)合。

(3)組織抗原封閉不全。除去檢查的抗原以外,組織中還可能存在類屬抗原(如Forssman氏抗原),可與組織中特異性抗原以外之之相應(yīng)抗體結(jié)合。延長(zhǎng)血清封閉時(shí)間。

(4)從組織中難于提純抗原性物質(zhì),所以制備的免疫血清中往往混雜一些抗其他組織成分的抗體,以致容易混淆。

(5)抗體分子上標(biāo)記的熒光素分子太多,這種過(guò)量標(biāo)記的抗體分子帶過(guò)多的陰離子,可吸附于正常組織上而呈現(xiàn)非特異性染色。

(6)熒光素不純、標(biāo)本固定不當(dāng)?shù)取?/u>

(7)一抗和二抗孵育條件和濃度不合適。調(diào)整一抗和二抗孵育條件和濃度至*。

(8)一抗和二抗孵育后的清洗不充分。增加清洗次數(shù)和延長(zhǎng)清洗時(shí)間。

2、陰性染色產(chǎn)生的原因有:

(1)一抗和二抗?jié)舛炔缓线m或孵育條件不妥。

(2)熒光素提前衰退。熒光素質(zhì)量不佳或操作過(guò)程中沒(méi)有注意避光等防止熒光素衰退的事項(xiàng)。

(3)血清封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。

(4)抗體稀釋液PH值不合適,影響抗原抗體反應(yīng)。

(5)組織切片不平、裂片或脫片很嚴(yán)重,易引起大塊陰性著色。

(6)組織標(biāo)本不新鮮或已經(jīng)冷凍組織制成的切片中抗原易彌散,易引起本來(lái)表達(dá)的部位陰性染色或弱著色。

(7)熒光顯微鏡不會(huì)使用,激發(fā)波長(zhǎng)選擇錯(cuò)誤。

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