樣品實驗方案

簡要概述

1.用測試化合物制備細胞（100 µL /孔/ 96孔板或25 µL /孔/ 384孔板）
2.加入等量的Apopxin™深紅色工作溶液
3.在室溫下孵育1小時
4.在Ex / Em = 650/680 nm（截止= 665 nm）或使用Cy5濾光片的熒光顯微鏡下監控熒光強度（底部讀取模式）

溶液配制

工作溶液配制

將10μLApopxin™深紅色（組分A）添加到1 mL的測定緩沖液（組分B）中，并充分混合以制成Apopxin™深紅色工作溶液。

操作步驟

1.通過向PBS或所需的緩沖液中加入10X /孔（96孔板）或2.5 µL /孔（384孔板）的10X測試化合物儲備溶液來處理細胞。 對于空白孔（不含細胞的培養基），添加相同量的化合物緩沖液。

2.將細胞板在5％CO2、37°C的培養箱中孵育所需的時間（對于*樹堿處理過的Jurkat細胞，需要4-6小時）以誘導凋亡。

3.在每個孔中加入100 µL /孔（96孔板）或25 µL /孔（384孔板）的Apopxin™深紅色工作溶液。

4.在避光條件下，于室溫下孵育細胞板至少1小時。

5.以800 rpm的速度離心細胞板（特別是非貼壁細胞）2分鐘（制動）。

6.使用熒光酶標儀（Ext / Em = 650/680 nm（截止= 665 nm））或使用帶有Cy5®濾光片的熒光顯微鏡對圖像池進行熒光強度監測。