樣品實驗方案

簡要概述

1.用測試化合物制備細胞（100 µL /孔/ 96孔板或25 µL /孔/ 384孔板）
2.加入等量的Apopxin™Green工作溶液
3.在室溫下孵育1小時
4.在Ex / Em = 490/525 nm（截止= 515 nm）或帶有FITC濾光片的熒光顯微鏡下監控熒光強度（底部讀取模式）

溶液配制

工作溶液配制

將10 µL 100X Apopxin™Green（組分A）添加到1 mL的測定緩沖液（組分B）中，并充分混合以制成Apopxin™Green工作溶液。

操作步驟

1.通過向細胞制備緩沖液中加入10XL /孔（96孔板）的10X測試化合物溶液，以所需的測試化合物處理細胞，總體積為100μL/孔。對于384孔板，請在細胞制備緩沖液中使用5 µL /孔的5X測試化合物溶液，總體積為25 µL /孔。對于空白孔（不含細胞的培養基），添加相同量的化合物緩沖液。

2.將細胞板在5％CO2、37°C的培養箱中孵育所需的時間（對于喜S堿處理過的Jurkat細胞，需要4-6小時）以誘導凋亡。

3.在每個孔中添加100 µL /孔（96孔板）或25 µL /孔（384孔板）的Apopxin™Green工作溶液。

4.在避光條件下，于室溫下孵育細胞板至少1小時。

5.以800 rpm的速度離心細胞板（特別是非粘附細胞）2分鐘（制動）。

6.使用熒光酶標儀（Ext / Em = 490/525 nm（Cutoff = 515 nm））或使用帶有FITC濾光片的熒光顯微鏡的圖像池監控熒光強度。