染料法熒光PCR的數(shù)據(jù)與探針法的相比，除了擴增曲線之外，還增加了熔解曲線分析。如何確定數(shù)據(jù)是好是壞？好的話，數(shù)據(jù)可以使用；壞的話，需要查明原因，擬定下一步的體系優(yōu)化方案。這里探討如何確定數(shù)據(jù)是好是壞，如果不好，查明原因，如何擬定下一步的優(yōu)化方案。

熔解曲線分析

熔解曲線分析是在定量PCR中常用的一種定量測定方法。

原理：由于在PCR定量分析中利用的是在低溫復性後，擴增產(chǎn)物會按堿基互補配對原則結合成DNA雙鏈，而有的熒光素在與雙鏈DNA結合產(chǎn)生活化，能產(chǎn)生熒 光效應。但由于反應中存在少量的非特異聚合體（如引物二聚體等），能引起干擾，但非特異聚合體的熔解溫度較特異性結合低，當擴增結束後，再緩慢加溫，當 DNA變性後，染料被釋放，熒光減少，而非特異性結合先于特異性結合減少，對熔解過程進行連續(xù)動態(tài)監(jiān)測可得熔解曲線，通過曲線將非特異性訊號和特異性訊號 區(qū)分出來，同時對特異性訊號區(qū)，熒光減少的快慢與濃度的對數(shù)成正比。

目的：減小非特異性結合和引物二聚體的影響。用導數(shù)來提高分析率。

用途：除正常測定外，可用來進行突變分析。

方法：1.在擴增完後，緩慢升高溫度，同時對熒光進行連續(xù)監(jiān)測，可以得到如下曲線：t1是擴增終點，t2是非特異性結合分離點，t3是DNA開始變性點。

 

2.分析上圖可知，t3以後是特異結合分離區(qū)，其熒光下降速度與終點擴增的基因成正比，但因為擴增是按等比數(shù)列增長，因此實際上是特異結合分離區(qū)熒光下降速度與樣本含量的對數(shù)成正比。由公式可得出標本濃度。

優(yōu)點：熔解曲線法定量PCR，排除非特異性結合的干擾，提高了測定的準確性和靈敏度，同時還能用于基因突變的分析。（原理：含突變位點的基因結合較正?；虿环€(wěn)定）

以下面的數(shù)據(jù)為例，通過熔解曲線和擴增曲線相結合，來介紹染料法熒光PCR數(shù)據(jù)分析的簡單流程。

舉例一、選取同一個基因，先看擴增曲線（RN VS CYCLER）：

 

擴增曲線成s 型，形態(tài)可以；再看擴增曲線（Delta RN VS CYCLER）：

 

Delta RN VS CYCLER 的擴增曲線形態(tài)也是比較標準的；二者都很正常時，再轉(zhuǎn)向熔解曲線， 這時，我們發(fā)現(xiàn)熔解曲線不太正常。

 

熔解曲線比較雜亂，有的溶解曲線是雙峰，有的熔解曲線是單峰，report 表示，有的tm在85度，有的是在89度。峰的位置也不相同。需要仔細分析，通過復孔，陰性對照等來分析數(shù)據(jù)。疑問是：產(chǎn)物是否相同？不同Tm的報告是真實的還是儀器的一種誤差？

值得提醒的是，不同儀器的report 結果不同，如ABI 的7000系列，只report 主要的tm；；而rotorgene 系列，則會報告每一個小峰的tm。

仔細看每個孔，選取其中正確的熔解曲線：

 

正確的熔解曲線：在某一特定溫度處有尖銳的單峰，該峰所在的溫度Tm，一般與引物設計及合成時的預測值比較接近。從樣本的角度，即采用了什么樣得樣本，孔 位置的角度（這幾個結果好的樣本孔是否相連，是否位于擴增儀的同排或者同列的位置），復孔的情況是否相似；操作的角度來進行分析和判斷；

正確的熔解曲線的數(shù)據(jù)，它的CT值是可以用的，可以進行成對的數(shù)據(jù)分析，如進行Δct分析。

不正確的熔解曲線的數(shù)據(jù)，要分析形成的原因。

選擇熔解曲線結果不好的孔，來分析：

 

這幾個孔的熔解曲線出現(xiàn)了雙峰，甚至三峰；峰的位置是否相同；結果是否可以認為是類似的原因造成的？ *峰的位置和第二峰的位置是否可以認為是一樣的；通過調(diào)整程序是否能降低非特異反應？

復孔的情況怎么樣：

 

分析所有復孔情況，看結果是否吻合。上圖的這個熔解曲線是復孔的熔解曲線，這樣可以說明，在一定程度存在非特異擴增的時候，第二峰的tm可能有一定差異；而這是兩個相同樣本的結果。而熔解曲線結果比較好的時候，復孔的結果也是不錯的。

好的熔解曲線和差的熔解曲線放在一起分析：

 

上圖中有一對復孔熔解曲線比較好，基本可以認為是單峰；一對復孔熔解曲線出現(xiàn)了雙峰；其實仔細看，好的熔解曲線前面也有一個很小很小的峰，位置和不好的雙峰是相同的。那么可以認為，差的熔解曲線也出現(xiàn)了特異性產(chǎn)物，雖然前面有一個非特異的峰。

好的熔解曲線和差的熔解曲線放在一起分析，轉(zhuǎn)過來看擴增曲線：

 

經(jīng)常要對應二者來看的。

再看陰性對照的熔解曲線是正常的，未被污染。再來看熔解曲線：

 

基本上分成兩種；好的和不好的；而不好的與好的，在熔解曲線的峰上就分析而言，是吻合的；需要調(diào)整程序，降低非特異性擴增；具體表現(xiàn)在程序上，就是提高退火溫度，縮短延伸時間。

結論：基本得到目的產(chǎn)物，下一步工作是優(yōu)化反應程序，提示：提高退火溫度，縮短延伸時間；

如果采用統(tǒng)一退火反應條件，對于不好的引物，建議直接重新設計引物，合成，以便得到好的實驗結果。

原文地址:/biotech/exp/PCR/2011/h821102252.html