一、Bradford法

該方法用于大多數蛋白質定量是相當的，特別是用于小分子多肽定量。如核糖核酸酶或等。但是，去污劑的濃度超過0.2%則影響定量結果。如TritonX-100，SDS，NP-40等。

1. Bradford染液配制：將100mg考馬斯亮藍溶于50 ml 95%的乙醇中，加入100ml 濃磷酸，然后，用雙蒸水補充至200ml，放4C至少6個月。

2. 作標準曲線的蛋白質樣本的準備：盡量使用與待測樣本性質相近的蛋白質作為標準蛋白，例如進行抗體定量，可用純化的抗體作為標準蛋白。如果待測樣本是未知的，也可用抗體作為標準蛋白。通常在20μg-150μg/100μl之間繪制標準曲線。

3. 將待測樣本溶于100μl緩沖溶液中，該緩沖溶液應于作標準曲線的緩沖溶液相同；

4. 按1：5用雙蒸水稀釋濃染料結合溶液，過濾離心沉淀物；

5. 每個樣本加5ml稀釋的染料結合溶液，作用5-30min。染液與蛋白質結合后，將由紅色變為藍色，即可在595nm光波長下測定其吸光度。注意，顏色反應不得超過30min；

6. 應用標準曲線計算待測樣本的濃度。

注意：應用Bradford法測定BSA的值是其重量的兩倍。

二、Bradford斑點試驗

該方法特別適用于檢測洗脫組分，以定位蛋白洗脫液。例如檢測洗脫液的吸附力的強弱。

1. 首先，濃縮Bradford染液。將100mg考馬亮藍溶于50 ml 95%的乙醇中，加入100ml 濃磷酸，然后，用雙蒸水補充至200ml，放4C至少6個月。這種染液也可從Bio-Rad公司購到；

2. 將8μl待測蛋白質樣本轉移至一 條Parafilm，Saran Wrap上或微孔板孔中。同時應設一洗脫液樣本作為空白對照；

3. 每個樣本孔中加2μl濃Bradford染液并混勻；

4. 大約2min后，含有蛋白質的樣本將變藍。該方法的靈敏度約為10μg/ml。此反應對去污劑的濃度超過0.2%時非常敏感。但KCl，NaCl，MgCl₂ 或EDTA對其無影響，Tris對其僅有輕微的影響。

三、Coomassie 斑點試驗

該方法特別適用于檢測洗脫組分以定位蛋白洗脫液。例如檢測洗脫液的吸附力的強弱。

1. 裁剪3MM厚的Whatman 紙約4mm² ；

2. 每個樣本點5μl于Whatman 紙上；

3. 自然干燥樣本或用電吹風吹干斑點，約1min或更少；

4. 將紙塊浸入0.25%的考馬斯亮藍溶液中（考馬斯亮藍溶于10%的甲醇，7%醋酸中）  30min；

5. 將紙塊放入10%的甲醇，7%醋酸溶液中洗滌3-5 min，然后干燥。

四、紫外分光度檢測法

蛋白質紫外光吸光率是所有的蛋白質定量方法中zui快的方法。通常在280nm光波長下讀數。其在280nm光波長下的zui大吸光率主要處決于和的存在。在205nm光波長的吸收也常用到。其在205nm光波長下的zui大吸光率主要處決于肽鏈，盡管氨基酸也有影響。另外，一個主要的優點是在測定蛋白質濃度時，樣本不會遭到損害。

1、純蛋白質溶液：

① 在280nm光波長下讀取與適當的對照相比較的吸光率；

② 對于抗體和BSA，可應用下表計算其濃度對其他蛋白質可粗約地估計：1個單位吸光率相當于1mg/ml。

蛋白質             A280 (1mg/ml)

IgG                  1.35

IgM                  1.2

BSA                 0.7

2、含有核苷酸的蛋白質溶液

①  在280nm和260nm或280nm和205nm光波長下讀取與適當的對照相比較的吸光率；

② 用下列等式粗略計算其濃度：

        蛋白質濃度（mg/ml）=(1.55×A280 )-(0.76×A260 )

        蛋白質濃度（mg/ml）= A205 /(27 + 120 A280/ A205 )