組織細胞用于遺傳學分析zui常見的是體外培養的細胞株，多為惡性腫瘤細胞株，且呈貼壁生長，僅小數細胞株為懸浮生長。培養細胞有來源易得、細胞分裂率高和染色體標本制出清晰度高等優點。組織細胞染色體制備的關鍵是掌握好體外細胞的生長動態，只有處在對數生的細胞才能出現較高的分裂相，所以積水仙素處理的時機及量是染色體標本形態及分裂指數的關鍵。
1、實驗材料
培養液（PRMI 1640、M199、DMEM等），小牛血清、0.025%胰蛋酶、秋水仙素，刻度離心管，直吸管及彎頭吸管，培養瓶或皿、KCL、甲醇、冰乙酸、載玻片。
2、培養液配制
培養液 85-95%
小牛血清 5-15%
雙抗（選擇） 100u/ml
3、操作過程
（1）培養細胞：選擇處于指數生、用大瓶培養的80-90%匯合單層培養細胞；
（2）終止培養：當有大量圓形發亮細胞出現時，加秋水仙素0.01-0.03ug/ml培養混合液，置溫箱繼續培養6-10小時以抑制分裂期細胞停止于分裂中期；（3）聚集細胞：
（A）搖動法：
可利用分裂中期細胞變圓與底物附著不牢特點，此時可持培養瓶，左右反復橫向水平搖動，可使90%的中期分裂細胞從瓶壁脫落；
（B）消化法：
將培養液倒入離心管內，給培養瓶內加0.025%液0.5-1ml/瓶，水平左右搖動，便培養瓶底壁面*接觸消化酶，稍后用彎頭吸管吹打，待細胞*脫落后，加入3-5ml前培養終止消化。用吸管移入裝有培養液的離心管內2000rpm10分鐘。棄上清液，留沉淀細胞；
（4）低滲處理：給沉淀細胞加頂溫的37℃0.075MKCL8ml左右，用吸管打均勻，在溫箱中靜置20-30分鐘；
（5）預固定：向低滲處理適當的離心管中加新鮮配制的3∶2甲醇，冰乙醇固定液1-2ml，用吸管輕松吹打調勻，此措施能起到使細胞表面輕微固定，可防止固定后細胞粘連成塊。
（6）固定：800-1000rpm10分鐘，棄上清液加新鮮配制的3∶2甲醇冰乙酸固定液10ml，加入時要沿管壁慢慢加入，后輕輕吹打，封口后室溫靜置30分鐘以上，反復三次；
（7）制片：末次離心后，倒掉上清液，留沉淀細胞，加新鮮配制固定液0.5ml左右，混勻后制片，其它同外周血方法。

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組織培養細胞染色體制備

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