一般培養瓶、培養板、培養皿的材質都是生物相容性的聚苯乙烯，且要求具有較好的光學性能。在加工成型后，要進行組織培養處理。各公司用的方法都不太一樣，而且這都是諱莫如深的商業秘密。其實不外乎兩種，一種是物理方法，即使培養細胞的那個面的粗糙度適合細胞粘附生長；第二種是化學方法，用季銨鹽、多肽或者血清、血漿等促進細胞粘附的物質涂覆表面。 
在重復使用培養材料的時候，無論用什么方法洗，都會破壞這層很薄的處理層，使培養材料的生物相容性變差。如果這樣的話，我們冒著培養物被污染的危險，還不如使用玻璃培養瓶呢。 
我為什么使用一次性細菌培養皿呢？其實這是國內供應商對這種培養皿的一個俗稱，應該從字面上翻譯成“一次性使用培養皿”，也就是“Disposable Petri Dish”。這是沒經過組織培養處理過的聚苯乙烯培養皿，買回后自己用聚賴氨酸、明膠、血清處理一下，滅菌后使用，效果不比細胞培養皿差，成本卻低了很多。尤其向大家以色列Mini Plast公司的一次性培養皿，Φ90的才8角錢一個，質量，比國產的同樣價格的強許多。 
還有，可以買比利時Orange公司的培養瓶，價格只有Coring或Nunc的60%，我使用了一年，效果不比Nunc和Coring的差，而且是經過人體工學處理的，使用起來很順手。 
其實DMEM細胞培養基的高糖和低糖對細胞培養影響并不大，我幾年前剛開始做細胞培養時也常為此困擾。如果為了保險起見，選高糖的好了。培養基中的、丙酮酸鈉濃度更重要，一定注意不同貨號培養基之間的細小差別，選組分全加入的貨號產品，畢竟省得不少另加試劑的開銷。HEPES的添加也很關鍵，尤其對代謝旺盛的細胞更是如此。選血清時，寧可買Hyclone公司的新生牛血清，也不要用國產胎牛血清，切記。經濟情況允許，建議用Hyclone的Define級血清，效果太好了。實際上國產胎牛血清都是新生牛，基本上都是病弱新生牛未哺乳前取的血，甚至不如進口新生牛血清，價格卻相差不多。國產血清太“臟”了，其中的內毒素、支原體等指標都達不到要求，zui近研究表明，內毒素是細胞凋亡的誘因之一。如果不做細胞因子和免疫相關的實驗，建議血清不要滅活，滅活后嚴重影響細胞生長速度，且細胞貼壁率降低。 

Gibico的血清很好，我讀碩士時一直用。但是zui近兩年由于瘋牛病的原因（Gibico的血清不都產在美國和澳洲，也有瘋牛病發生的國家），進口的少，價格也貴。同一價格的前提下，畢竟Hyclone的Define級質量更好。Sigma的血清也很好，質量標準比Hyclone的還嚴格。具體選那種，還得根據您的工作性質而定，畢竟在國內科研經費有限，除非老板有上千萬的項目，可以不計實驗成本。 

關于血清濃度和是否滅活，取決于您的具體實驗，并沒有嚴格的規定。一般原代細胞培養血清濃度稍高，我用20%，有利于提高細胞貼壁成活率，尤其是消化分離后沒有培養而直接凍存的細胞復蘇，就應該加25%血清。 
如果做MTT實驗或類似的四唑鹽參與線粒體代謝的實驗，血清濃度盡可能低一些，一般5%-10%，可以減少血清對結果的干擾，尤其是采用水溶液法（如加10%SDS鹽酸溶解而不用DMSO）時更加重要。如果您做流式細胞分析，需要分析細胞周期，要經過一個“同步化”過程，有的學者用血清饑餓法，也就是24小時不加血清，使細胞周期趨于同步化。 

我的細胞傳代原則：不用EDTA，只用，先用D-hank’s洗掉殘留培養基和血清，然后按1ml/10cm2培養面積加入，鏡下觀察，待到細胞回縮明顯且尚未脫壁時（這個過程不超過1分鐘），倒掉大部分，只保留細胞表面被少量濕潤，37度培養箱中放置5-15分鐘，直至細胞可象流沙狀下滑，加入含血清培養基終止消化，輕輕吹打使細胞散開，如有團塊，可考慮200目篩過濾，可不洗滌離心細胞。此種方法對細胞傷害zui小，如果做流式細胞分析，也可用此法，只不過在中加入等量EDTA溶液，出來的峰極規整漂亮。 
某些細胞只用常規培養基不行，還必須補充生長因子或特殊量的氨基酸才能正常生長，要多參考相關文獻。 

另外，二氧化碳張力和溫度也很重要，有些細胞需要較高的二氧化碳濃度或較特殊的溫度。可選用透氣蓋培養瓶或培養皿培養板培養。