學習紫外分光光度法測定核酸含量的原理和操作方法，熟悉紫外分光光度計的基本原理和使用方法。
二、原理
核酸、核苷酸及其衍生物的分子結構中的嘌呤、嘧啶堿基具有共軛雙健系統（－C＝C一C＝C 一），能夠強烈吸收250~280nm 波長的紫外光。核酸（DNA，RNA）的zui大紫外吸收值在260nm 處。遵照Lambert-Beer 定律，可以從紫外光吸收值的變化來測定核酸物質的含量。
在不同pH 溶液中嘌呤、嘧啶堿基互變異構的情況不同，紫外吸收光也隨之表現出明顯的差異，它們的摩爾消光系數也隨之不同。所以，在測定核酸物質時均應在固定的pH溶液中進行。
核酸的摩爾消光系數（或吸收系數），通常以ε（ρ）來表示，即每升含有一摩爾核酸磷的溶液在260nm 波長處的消光值（即光密度，或稱為光吸收）。核酸的摩爾消光系數不是一個常數，而是依賴于材料的前處理、溶液的pH 和離子強度發生變化。它們的經典數值（pH = 7.0）如下：
DNA 的ε（ρ）= 6 000 ~ 8 000
RNA 的ε（ρ）= 7 000 ~ 10 000
小牛胸腺DNA 鈉鹽溶液（pH = 7.0）的ε（ρ）= 6 600，DNA 的含磷量為9.2%，含1μg/mL DNA 鈉鹽的溶液光密度為0.020。RNA 溶液（pH = 7.0）的ε（ρ）= 7 700~7 800，RNA 的含磷量為9.5%，含1μg /mL RNA 溶液的光密度為0.022~0.024。采用紫外分光光度法測定核酸含量時，通常規定：在260nm 波長下，濃度為1μg/mL 的 DNA 溶液其光密度為0.020，而濃度為1μg/mL 的RNA 溶液其光密度為0.024。因此，測定未知濃度的DNA
（RNA）溶液的光密度OD260nm，即可計算測出其中核酸的含量。該法簡單、快速、靈敏度高，如核酸3μg／mL 的含量即可測出。對于含有微量蛋白質和核苷酸等吸收紫外光物質的核酸樣品，測定誤差較小，若樣品內混雜有大量的上述吸收紫外光物質，測定誤差較大，應設法事先除去。
由于降解或水解作用，核酸的光密度可以增高約40％，這就是*的增色效應（hyperchromic effect）。在大分子的核酸中，氫鍵和π-鍵相互作用改變了堿基的共振行為。因此，核酸的光密度低于構成它的核苷酸的光密度，該現象稱為減色效應（hypochromic effect）。
三、實驗材料、主要儀器和試劑
1．試材：核酸樣品DNA 或RNA。
2． 主要儀器
（1）分析天平
（2）紫外分光光度計
（3）冰浴或冰箱
（4）離心機
（5）離心管（10mL）
（6）燒杯（10mL）
（7）容量瓶（50mL、100mL）
（8）移液管（0.5ml、2mL 和5mL）
（9）藥品勺和玻璃棒
（10）試管和試管架。
3．試劑
（1）5%~6%氨水：用25%~30％氨水稀釋5 倍。
（2）鉬酸銨-過氯酸試劑：取3.6mL70%過氯酸和0.25g 鉬酸銨溶于96.4mL 蒸餾水中。
四、操作步驟
1．核酸樣品純度的測定
（1）準確稱取待測的核酸樣品0.5g，加少量蒸餾水（或無離子水）調成糊狀，再加適量的水，用5%~6%氨水調至pH7，定容至50mL。
（2）取兩支離心管，甲管內加入2mL 樣品溶液和2mL 蒸餾水；乙管內加入2mL 樣品溶液和2mL 沉淀劑（沉淀除去大分子核酸，作為對照）。混勻，在冰浴（或冰箱）中放置30min，3 000r/min 離心10min。從甲、乙兩管中分別取0.5mL 上清液，用蒸餾水定容至50mL。選用光程為1cm 的石英比色杯，在260nm 波長下測其光密度。
（3）計算
紫外吸收法測定核酸的含量
如果待測的核酸樣品不含酸溶性核苷酸或可透析的低聚多核苷酸，則可將樣品配制成一定濃度的溶液（20~50μg/mL）在紫外分光光度計上直接測定。
2．核酸溶液含量的測定
當待測的核酸樣品中含有酸溶性核苷酸或可透析的低聚多核苷酸，在測定時需要加鉬酸銨-過氯酸沉淀劑，沉淀除去大分子核酸，測定上清液260 nm 處光密度作為對照。
（1）取2 支離心管，每管各加入2mL 待測的核酸溶液，再向甲管內加2mL 蒸餾水，向乙管內加2mL 沉淀劑。混勻，在冰浴（或冰箱）中放置10min，3 000r/min 離心10min。將甲、乙兩管清液分別稀釋至光密度在0.1~1.0 之間。選用光程為1cm 的石英比色杯，在260nm 波長下測其光密度OD260nm。
（2）計算
紫外吸收法測定核酸的含量
五、思考題
1．采用紫外光吸收法測定樣品的核酸含量，有何優點及缺點？
2．若樣品中含有核苷酸類雜質，應如何校正？