加樣量
加樣品的多少與電泳條件、樣品的性質(zhì)、染色方法與檢測(cè)手段靈敏度密切相關(guān)。作為一般原則,檢測(cè)方法越靈敏,加樣量則越少,對(duì)分離更有利。如加樣量過大,則電泳后區(qū)帶分離不清楚,甚至互相干擾,染色也較費(fèi)時(shí)。如電泳后用洗脫法定量時(shí),每厘米加樣線上需加樣品0.1 μl~0.5 μl約相當(dāng)于5 μg~1000 μg蛋白。血清蛋白常規(guī)電泳分離時(shí),每厘米加樣線加樣量不超過1 μl,相當(dāng)于60μg~80μg的蛋白質(zhì)。但糖蛋白和脂蛋白電泳時(shí),加樣量則應(yīng)多些。對(duì)每種樣品加樣量均應(yīng)先作預(yù)實(shí)驗(yàn)加以選擇。點(diǎn)樣好壞是獲得理想圖譜的重要環(huán)節(jié)之一,以印章法加樣時(shí),動(dòng)作應(yīng)輕、穩(wěn),用力不能太重,以免將薄膜弄壞或印出凹陷而影響電泳區(qū)帶分離效果。
電量的選擇
電泳過程應(yīng)選擇合適的電流強(qiáng)度,一般電流強(qiáng)度為0.4 mA/cm~0.5 mA/cm寬膜為宜。電流強(qiáng)度高,尤其在溫度較高的環(huán)境中,可引起蛋白質(zhì)變性或由于熱效應(yīng)引起緩沖液中水分蒸發(fā),使緩沖液濃度增加,造成膜片干涸。電流過低,則樣品泳動(dòng)速度慢且易擴(kuò)散。