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信帆生物
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信帆生物:畢氏酵母氯化鋰轉化法

時間:2016/4/2閱讀:1355
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試劑

1M LiCl 用去離子蒸餾水配制,0.22um濾膜過濾除菌;必要時用消毒去離子水稀釋

50% PEG3350 Sigma P3640? 用去離子蒸餾水配制,0.45um濾膜過濾除菌,用較緊的蓋子的瓶子分裝 (氯化鋰轉化法只能PEG3350,不能用PEG8000,PEG3350在北京萊博生物有售,80元/100克)

2mg/ml salmon sperm DNA / TE(10mM Tris-Cl, pH8.0, 1.0mM EDTA)-20℃保存

注:醋酸鋰對畢氏酵母無效,對釀酒酵母有效,僅氯化鋰有效;PEG3350可屏蔽高濃度LiCl的毒害作用。

感受態畢氏酵母的制備

1. 接種Pachia pastoris到50ml YPD培養基中,30℃搖菌過夜(約24~28h)培養到OD值為0.8~1.0(約108 Cells/ml);培養基里有流沙樣的菌體在流動

2. 收獲細胞,用25ml無菌水洗滌一次,室溫下1500g離心10min;

3. 重懸細胞于1ml 100mM LiCl溶液中,將懸液轉入1.5ml離心管;

4. 離心機zui大速度離心15秒沉淀菌體,重懸菌體于400ul 100mM LiCl溶液中;

5. 按50ul/管分裝,立即進行轉化;

注:不要將感受態酵母菌冰浴;

畢氏酵母的轉化

1. 煮沸1ml鮭魚精DNA 5min,迅速冰浴以制備單鏈擔體DNA;鮭魚精DNA主要是防止目的基因的降解,協助目的基因的轉化

2. 將感受態酵母菌離心,以Tips去除殘余的LiCl溶液;

3. 對于每一個轉化,按以下順序加入:

50% PEG3350????????????????????? 240ul

1M LiCl?????????????????????????? 36ul

2mg/ml 單鏈Salmon sperm DNA?????? 25ul

5~10ug/50ul H2O 質粒DNA????????? 50ul

4. 劇烈旋渦混勻直至沉淀菌體*分布均勻(約1min);

5. 30℃水浴孵育30min;

6. 42℃水浴熱休克20~25min;

7. 6000~8000rpm離心收集酵母菌體;

8. 重懸酵母于1ml YPD培養基,30℃搖床孵育;

9. 1~4h后,取25~100ul菌液鋪選擇性培養基平板,于30℃培養2~3天鑒定;

畢氏酵母PEG1000轉化法

試劑

緩沖液A:1.0M Sorbitol,10mM Bicine,pH8.35(sigma),3%(v/v)ethylene glycol

緩沖液B:40%(w/v)PEG1000(sigma),0.2M Bicine,pH8.35

緩沖液C:0.15M NaCl,10mM Bicine,pH8.35

未污染的新鮮、試劑級DMSO,-70℃保存

注:1. 緩沖液A、B、C均用濾膜過濾,-20℃保存;

2. 將DNA直接加在凍結的酵母細胞上是本實驗的關鍵之處(即使在冰上解凍的待轉化細胞,其攝取外源DNA的能力也在解凍過程中迅速下降;如進行多樣品的轉化,建議按6樣品/組進行);

待轉化畢氏酵母的制備

1. 接種環接種Pachia pastoris于YPD平板,30℃培養2d;

2. 挑取單克隆酵母菌株于10mlYPD培養基中,30℃振蕩培養過夜;

3. 取步驟2中小量菌液接種到100mlYPD培養基中振蕩培養,待其OD值從0.1升到0.5~0.8;

4. 室溫下3000g離心收集酵母菌體,50ml緩沖液A洗滌一次;

5. 重懸菌體于4ml緩沖液A中,按0.2ml/管分裝于1.5ml的離心管中,每管加入11ulDMSO,混合后迅速于液氮中冷凍,

6. -70℃保存

畢氏酵母的轉化

1. 將約50ug線性化質粒DNA溶于20ul TE或水中,直接加于凍結的酵母細胞中;加入擔體DNA(40ug變性超聲線性化鮭魚精DNA)以獲得zui大轉化率;

2. 37℃水浴孵育5min,中間混合樣品1~2次;

3. 取出離心管,加入1.5ml緩沖液B,*混勻;

4. 30℃水浴孵育1h;

5. 室溫下2000g離心10min,去除上清液,菌體沉淀重懸于1.5ml緩沖液C中;

6. 離心樣品,去除上清液,輕微操作將樣品重懸于0.2ml緩沖液C中;

7. 將所有轉化液鋪于選擇性平板,于30℃孵育3~4天后,鑒定;

畢赤酵母轉化方法zui常用的是電轉化法和原生質體法,其中電轉化法zui為方便,轉化效率zui高,zui容易產生多拷貝整合。由于原生質體法必須首先制備去除細胞壁(cell wall)的原生質體細胞以利于DNA 進入,然后細胞再生細胞壁(cell wall),產生轉化體,而ZeocinR 抑制細胞壁(cell wall)的形成,導致不能產生轉化體。因此利用ZeocinR 作為選擇標記的載體如p PICZ 系列,不能使用原生質體法進行轉化。

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