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PCR引物設計及評價實驗

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實驗方法原理聚合梅鏈式反應(polymerase chain reaction)即PCR技術,是一種在體外快速擴增特定基因或DNA 序列的方法,故又稱基因的體外擴增法。PCR技術已成為分子生物學研究中使用zui多,zui廣泛的手段之一,而引物設計是PCR技術中至關重要的一環,使用不合適的PCR引物容易導致實驗失敗:表現為擴增出目的帶之外的多條帶(如形成引物二聚體帶),不出帶或出帶很弱,等等。現在PCR引物設計大都通過計算機軟件進行,可以直接提交模板序列到特定網頁,得到設計好的引物,也可以在本地計算機上運行引物設計專業軟件。
實驗步驟

一、引物搜索 

1.  打開Primer premier5.0軟件,調入人瘦素(leptin)基因序列:點擊“file"    “open"   “ DNA sequence";或者直接點擊 “file"  “new"  “DNA sequence",彈出一對話框如下圖,然后將序列人瘦素(leptin) 基因復制在空白框。

 

 

2.  序列文件顯示如圖,點擊“Primer";

 

3.  進一步點擊“search" 按鈕,出現“search criteria"窗口,有多種參數可以調整。搜索目的(Seach For)有三種選項,PCR引物(PCR Primers),測序引物(Sequencing Primers),雜交探針(Hybridization Probes)。搜索類型(Search Type)可選擇分別或同時查找上、下游引物(Sense/Anti-sense Primer,或Both),或者成對查找(Pairs),或者分別以適合上、下游引物為主(Compatible with Sense/Anti-sense Primer)。另外還可改變選擇區域(Search Ranges),引物長度(Primer Length),選擇方式(Search Mode),參數選擇(Search Parameters)等等。使用者可根據自己的需要設定各項參數。我們將Product Size設置300-350,其他參數使用默認值。

 

然后點擊“OK" ,隨之出現的Search Progress窗口中顯示Search  Completed時,再點擊“OK"。

 

4、這時搜索結果以表格的形式出現,有三種顯示方式,上游引物(Sense),下游引物(Anti-sense),成對顯示(Pairs)。默認顯示為成對方式,并按優劣次序(Rating)排列,滿分為100,即各指標基本都能達標。

 

5.  按照搜尋結果顯示,在主窗口中檢查該引物對的二級結構情況,逐條分析,依次篩選。下面進行序列篩選:點擊其中一對引物,如第21#引物,在“Peimer Premier"主窗口,如圖所示:該圖分三部分,zui上面是圖示PCR模板及產物位置,中間是所選的上下游引物的一些性質,zui下面是四種重要指標的分析,包括發夾結構(Hairpin),二聚體(Dimer),錯誤引發情況(False Priming),及上下游引物之間二聚體形成情況(Cross Dimer)。當所分析的引物有這四種結構的形成可能時,按鈕由“None" 變成“Found" ,點擊該按鈕,在左下角的窗口中就會出現該結構的形成情況。一對理想的引物應當不存在任何一種上述結構,因此的情況是zui下面的分析欄沒有“Found",只有“None" 。值得注意的是中間一欄的末尾給出該引物的*退火溫度,可參考應用。

 

二、引物分析 

1.  打開oligo的頁面如下:

 
2.  單擊file菜單再點open或點擊“打開"快捷圖標或者用快捷鍵“CTrl+O"可彈出一對話框,然后選擇序列人瘦素(leptin) 基因。出現以下窗口。

 

3.  點擊“window"再點擊“Tile",出現以下窗口,圖中顯示的三個指標分別為Tm、ΔG和Frq,因為分析要涉及多個指標,起動窗口的cascade排列方式不太方便,可從windows菜單改為tile方式。如果覺得太擁擠,可去掉一個指標。

?G值反映了序列與模板的結合強度,引物的?G值在5’端和中間值比較高,而在3’端相對低。

Tm值曲線以選取72℃附近為佳,5’到3’的下降形狀也有利于引物引發聚合反應。

Frq曲線為“Oligo 6"新引進的一個指標,揭示了序列片段存在的重復機率大小。選取引物時,宜選用3’端Frq值相對較低的片段。

 

4.  在設計時,可依據圖上三種指標的信息選取序列,如果覺得合適,可點擊Tm圖塊上左下角的Upper按鈕,選好上游引物,此時該按鈕變成紅色,表示上游引物已選取好。下游引物的選取步驟基本同上,只是按鈕變成Lower。

 

5.  當上下游引物全選好以后,需要對引物進行評價。可以用“Analyse"菜單分析你的引物:比如有無引物二聚體、發卡結構等等。首先檢查引物二聚體尤其是3’端二聚體形成的可能性。需要注意的是,引物二聚體有可能是上游或下游引物自身形成,也有可能是在上下游引物之間形成(cross dimer)。二聚體形成的能值越高,越不符合要求。一般的檢測(非克隆)性PCR,對引物位置、產物大小要求較低,因而應盡可能選取不形成二聚體或其能值較低的引物。第二項檢查是發夾結構(hairpin);與二聚體相同,發夾結構的能值越低越好。一般來說,這兩項結構的能值以不超過4.5為好。當然,在設計克隆目的的PCR引物時,引物兩端一般都添加酶切位點,必然存在發夾結構,而且能值不會太低。這種PCR需要通過靈活調控退火溫度以達到效果,對引物的發夾結構的檢測就不應要求太高。第三項檢查為GC含量,以45-55%為宜。有一些模板本身的GC含量偏低或偏高,導致引物的GC含量不能被控制在上述范圍內,這時應盡量使上下游引物的GC含量以及Tm值保持接近,以有利于退火溫度的選擇。

當我們結束以上三項檢測,按Alt+P鍵彈出PCR窗口,其中總結性地顯示該引物的位置、產物大小、Tm值等參數,zui有用的是還給出了*的*退火溫度和簡單的評價。



收起 
注意事項

1.  注意:在填antisense時要注意3’到5’翻轉成5’到3’

其他一、引物設計原則 

聚合梅鏈式反應(polymerase chain reaction)即PCR技術,是一種在體外快速擴增特定基因或DNA 序列的方法,故又稱基因的體外擴增法。PCR技術已成為分子生物學研究中使用zui多,zui廣泛的手段之一,而引物設計是PCR技術中至關重要的一環,使用不合適的PCR引物容易導致實驗失敗:表現為擴增出目的帶之外的多條帶(如形成引物二聚體帶),不出帶或出帶很弱,等等。現在PCR引物設計大都通過計算機軟件進行,可以直接提交模板序列到特定網頁,得到設計好的引物,也可以在本地計算機上運行引物設計專業軟件。

引物設計原則如下

1.  引物應在序列的保守區域設計并具有特異性。引物序列應位于基因組DNA的高度保守區,且與非擴增區無同源序列。這樣可以減少引物與基因組的非特異結合,提高反應的特異性;

2.  引物的長度一般為15-30 bp。常用的是18-27 bp,但不應大于38,因為過長會導致其延伸溫度大于74℃,不適于Taq DNA聚合酶進行反應;

3.  引物不應形成二級結構。引物二聚體及發夾結構的能值過高(超過4.5kcal/mol)易導致產生引物二聚體帶,并且降低引物有效濃度而使PCR反應不能正常進行;

4.  引物序列的GC含量一般為40-60%。過高或過低都不利于引發反應。上下游引物的GC含量不能相差太大;

5.  引物所對應模板位置序列的Tm值在72℃左右可使復性條件*。Tm值的計算有多種方法,如按公式Tm=4(G+C)+2(A+T);

6.  引物5'端序列對PCR影響不太大,因此常用來引進修飾位點或標記物。可根據下一步實驗中要插入PCR產物的載體的相應序列而確定。

7.  引物3’端不可修飾。引物3'端的末位堿基對Taq酶的DNA合成效率有較大的影響。不同的末位堿基在錯配位置導致不同的擴增效率,末位堿基為A的錯配效率明顯高于其他3個堿基,因此應當避免在引物的3'端使用堿基A。

8.  引物序列自身或者引物之間不能在出現3個以上的連續堿基,如GGG或CCC,也會使錯誤引發機率增加;

9.  G值是指DNA雙鏈形成所需的自由能,該值反映了雙鏈結構內部堿基對的相對穩定性。應當選用3'端G值較低(值不超過9),而5’端和中間G值相對較高的引物。引物的3’端的G值過高,容易在錯配位點形成雙鏈結構并引發DNA聚合反應;

值得一提的是,各種模板的引物設計難度不一。有的模板本身條件比較困難,例如GC含量偏高或偏低,導致找不到各種指標都十分合適的引物;在用作克隆目的的PCR因為產物序列相對固定,引物設計的選擇自由度較低,在這種情況只能退而求其次,盡量去滿足條件。

二、引物設計軟件Primer premier5.0及oligo6.0 

“Premier"的主要功能分四大塊,其中有三種功能比較常用,即引物設計、限制性內切酶位點分析和DNA 基元(motif)查找。“Premier"還具有同源性分析功能,但并非其特長,在此略過。此外,該軟件還有一些特殊功能,其中zui重要的是設計簡并引物,另外還有序列“朗讀"、DNA 與蛋白序列的互換、語音提示鍵盤輸入等等。有時需要根據一段氨基酸序列反推到DNA 來設計引物,由于大多數氨基酸(20 種常見結構氨基酸中的18 種)的遺傳密碼不只一種,因此,由氨基酸序列反推DNA 序列時,會遇到部分堿基的不確定性。這樣設計并合成的引物實際上是多個序列的混和物,它們的序列組成大部分相同,但在某些位點有所變化,稱之為簡并引物。遺傳密碼規則因物種或細胞亞結構的不同而異,比如在線粒體內的遺傳密碼與細胞核是不一樣的。“Premier"可以針對模板DNA 的來源以相應的遺傳密碼規則轉換DNA 和氨基酸序列。軟件共給出八種生物亞結構的不同遺傳密碼規則供用戶選擇,有纖毛蟲大核(Ciliate Macronuclear)、無脊椎動物線粒體(Invertebrate Mitochondrion)、支原體(Mycoplasma)、植物線粒體(Plant Mitochondrion)、原生動物線粒體(Protozoan Mitochondrion)、一般標準(Standard)、脊椎動物線粒體(Vertebrate Mito-chondrion)和酵母線粒體(Yeast Mitochondrion)。
 
對引物進行分析評價的的軟件中,“oligo" 是zui的。它的使用并不十分復雜,Oligo 6.0的界面是三個圖,Tm圖、ΔG圖和Frq圖。“Oligo"的功能比“Premier"還要單一,就是引物設計。但它的引物分析功能如此強大以至于能。所以引物設計的*搭配是“Premier"進行引物搜索“Oligo" 對引物分析評價。


二、作業 

1.  提交使用Primer premier5.0及oligo6.0軟件進行人瘦素(leptin) mRNA引物的設計結果;

(1)使用引物設計軟件Primer premier5.0進行人瘦素(leptin) mRNA引物搜索結果截圖。(包括S鏈和A鏈截圖)

(2)oligo6.0分析此對引物的結果。(包括Duplex formation、Hairpin formation、False Priming Sites截圖)

(3)綜合Primer premier5.0與oligo6的引物設計結果為

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